اثر حفاظتی ترکیبی ویبریو پاراهمولیتیکوس غیرفعال و ویروس سندروم لکه سفید پرتوتابی شده بر میگو وانامی به دو روش تزریقی و حمامی

سال انتشار: 1402
نوع سند: مقاله ژورنالی
زبان: فارسی
مشاهده: 138

فایل این مقاله در 8 صفحه با فرمت PDF قابل دریافت می باشد

استخراج به نرم افزارهای پژوهشی:

لینک ثابت به این مقاله:

شناسه ملی سند علمی:

JR_JONSAT-44-4_018

تاریخ نمایه سازی: 5 مهر 1402

چکیده مقاله:

ویروس سندرم لکه سفید یکی از عوامل عفونت زای مهم میگو می باشد. در این تحقیق، از نمونه های میگو عفونی و جمع آوری شده از مزارع میگو استان بوشهر، ویروس سندروم  لکه سفید جداسازی و در همولنف خرچنگ دراز تکثیر و از طریق آزمون PCR وجود ویروس تایید گردید. تیتراسیون ویروس در پست لاروهای میگو به روش کربر /ml۵۰LD ۱۰۵.۴ محاسبه و غیرفعال سازی با بیم الکترون انجام شد. ارزش ۱۰D و دز مطلوب پرتو الکترون برای غیرفعال سازی این ویروس به ترتیب ۸۵/۱ و ۱۳ کیلوگری به دست آمد. ویروس پرتوتابی شده با الکترون به عنوان واکسن- الکترون و باکتری ویبریوپاراهمولیتیکوس پرتوتابی شده به عنوان محرک برای ایمن سازی میگو وانامی استفاده شدند. دز حفاظتی ۵۰ % برای گروه های دریافت کننده واکسن الکترون، واکسن الکترون همراه با باکتری ویبریو پرتوتابی شده و گروه دریافت کننده باکتری ویبریو پرتوتابی شده به تنهایی در روش تزریقی به ترتیب ۶۲/۵، ۳۰/۶ و ۸۷/۲ محاسبه شد. درصد بقا نسبی این سه گروه در روش تزریقی به ترتیب ۶۴ %، ۷۲ % و ۲۲ % و در روش حمامی به ترتیب ۷۵ %، ۸۵ % و ۵/۱۲ % محاسبه شد. با توجه به نتایج آزمون مواجهه دو گروه ۱ و ۲ در مقابل ویروس زنده اثر حفاظتی خوبی نشان دادند. لذا نتیجه گیری می شود که باکتری ویبریو پاراهمولیتیکوس پرتوتابی شده می تواند به عنوان یک محرک ایمنی اثر حفاظتی واکسن- الکترون را در میگوها تقویت نماید. هم چنین هر دو روش تزریقی و حمامی برای واکسیناسیون میگوها بدون اختلاف معنی دار در درصد بقا نسبی مناسب می باشند.

کلیدواژه ها:

نویسندگان

فرحناز معتمدی سده

پژوهشکده ی کشاورزی هسته ای، پژوهشگاه علوم و فنون هسته ای، سازمان انرژی اتمی، صندوق پستی: ۱۴۹۸-۳۱۴۸۵، کرج- ایران

رضا روشن

پژوهشکده ی کشاورزی هسته ای، پژوهشگاه علوم و فنون هسته ای، سازمان انرژی اتمی، صندوق پستی: ۱۴۹۸-۳۱۴۸۵، کرج- ایران

مراجع و منابع این مقاله:

لیست زیر مراجع و منابع استفاده شده در این مقاله را نمایش می دهد. این مراجع به صورت کاملا ماشینی و بر اساس هوش مصنوعی استخراج شده اند و لذا ممکن است دارای اشکالاتی باشند که به مرور زمان دقت استخراج این محتوا افزایش می یابد. مراجعی که مقالات مربوط به آنها در سیویلیکا نمایه شده و پیدا شده اند، به خود مقاله لینک شده اند :
  • Sánchez‐Martínez, J.G., G. Aguirre‐Guzmán, H. Mejía‐Ruíz, White spot syndrome virus ...
  • P.S. Mead, et al., Food-related illness and death in the ...
  • L. Beuchat, Combined effects of water activity, solute, and temperature ...
  • C. Pruzzo, et al., Pathogenic Vibrio species in the marine ...
  • H.-C. Wong, et al., Incidence of highly genetically diversified Vibrio ...
  • B.A. Akhoundzadeh, et al., The study of Vibrio SPP. In ...
  • D. Chen, P. Hanna, Immunodetection of specific Vibrio bacteria attaching ...
  • G. Nash, Vibriosis and its control in pond-reared Penaeus monodon ...
  • M. Alsharifi, A. Müllbacher, The [gamma]-irradiated influenza vaccine and the ...
  • B. Raie Jadidi, H. Erfan-Niya, A. Ameghi, Optimizing the process ...
  • M. Alsharifi, et al., Intranasal flu vaccine protective against seasonal ...
  • A.J. Hume, et al., Inactivation of RNA viruses by gamma ...
  • S. Javan, et al., Evaluation of immune responses and histopathological ...
  • F. Motamedi Sedeh, et al., Improved Whole Gamma Irradiated Avian ...
  • F. Motamedi‐Ssedeh, et al., Carboxymethyl chitosan bounded iron oxide nanoparticles ...
  • M. Afsharnasab, et al., Incidence of white spot disease (WSD) ...
  • M. Afsharnasab, et al., Gross sign, histopathology and polymerase chain ...
  • H. Du, et al., Increased resistance to white spot syndrome ...
  • M. Heidareh, et al., White spot syndrome virus inactivation study ...
  • Titration of the Iranian White Spot Virus isolate, on Crayfish Astacus leptodactylus and Penaeus semisulcatus [مقاله ژورنالی]
  • M.C. Van Hulten, et al., White spot syndrome virus envelope ...
  • J. Witteveldt, et al., Protection of Penaeus monodon against white ...
  • A. Namikoshi, et al., Vaccination trials with Penaeus japonicus to ...
  • F.M. Sedeh, et al., Preparation of FMD type A۸۷/IRN inactivated ...
  • G. Karber, Foot and Mouth Disease, Karber Formula for calculation ...
  • M. Heidarieh, et al, Immunization of Shrimp by Irradiated Vibrio ...
  • F. Motamedi-Sedeh, et al, Protection of Litopenaeus vannamei against white ...
  • H. Bahnemann, Binary ethylenimine as an inactivant for foot-and-mouth disease ...
  • H.G. Bahnemann, Inactivation of viral antigens for vaccine preparation with ...
  • F. Brown, et al., The use of acetylethyleneimine in the ...
  • T. Grieb, et al., Effective use of gamma irradiation for ...
  • J. Lombardo, E. Smolko, A biotechnological project with a gamma ...
  • J.R. Polley, Factors influencing inactivation of infectivity and hemagglutinin of ...
  • C. Kaplan, The antigenicity of γ-irradiated vaccinia virus, Epidemiology & ...
  • M. Reitman, H.R. Tribble Jr, Inactivation of Venezuelan Equine Encephalomyelitis ...
  • M. Reitman, H.R. Tribble Jr, L. Green, Gamma-irradiated Venezuelan equine ...
  • E. Pollard, The action of ionizing radiation on viruses, in ...
  • W. Ginoza, Inactivation of viruses by ionizing radiation and by ...
  • E.E. Smolko, J.H. Lombardo, Virus inactivation studies using ion beams, ...
  • T. Preuss, et al., Comparison of two different methods for ...
  • نمایش کامل مراجع