اثر شدت های مختلف نوری بر کالوس زایی و میزان رنگیزه کالوس ها در جداکشت های گلی و رویشی گل محمدی Rosa damascena Miller.) و گل سرخ مینیاتور (Rosa miniature)

سال انتشار: 1390
نوع سند: مقاله ژورنالی
زبان: فارسی
مشاهده: 137

فایل این مقاله در 23 صفحه با فرمت PDF قابل دریافت می باشد

استخراج به نرم افزارهای پژوهشی:

لینک ثابت به این مقاله:

شناسه ملی سند علمی:

JR_JOAGK-3-1_004

تاریخ نمایه سازی: 12 مهر 1400

چکیده مقاله:

در این پژوهش، اثر نور و تاریکی بر کالوس­زایی جداکشت­های رویشی (برگ، دمبرگ و ساقه) و گلی (گلبرگ، بساک و مادگی) و میزان رنگیزه­های (کلروفیل و آنتوسیانین) کالوس­ها در دو گونه­ی Rosa damascena Mill. و Rosa miniature مقایسه شده است. ریزنمونه های سترون روی محیط MS که غلظت­های مختلف ۶ بنزیل آمینوپورین (BAP) و ۲ و ۴ دی کلروفنوکسی استیک اسید (۲, ۴-D) به آن اضافه گردیده بود، کشت شده و در شدت نوری ۱۰۰۰، ۲۰۰۰ لوکس و تاریکی تیمار شدند. در مرحله تولید کالوس از جداکشت­های گل محمدی، غلظت­های ۴ میلی­گرم در لیتر ۲, ۴-D و ۵/۱ میلی­گرم در لیتر BAP بهترین بازدهی را داشتند. بر عکس در گل سرخ مینیاتور جداکشت های مختلف در فرایند کال زایی نسبت به غلظت های مختلف هورمونی به شکل متنوعی پاسخ دادند. در همه جداکشت­ها، نور، بنیان گذاری کالوس را به تاخیر انداخت و تاریکی روند کالوس زایی را بسیار تسریع نمود. به علاوه، کال­زایی جداکشت­های رویشی در هر دو گونه زودتر از جداکشت­های گلی شروع شد. قابل ذکر است که بنیان گذاری کالوس از ریز نمونه­های گلی ورد مینیاتور یک هفته زودتر از گل محمدی آغاز گردید. نرخ رشد کالوس نیز در جداکشت­های ورد مینیاتور بیشتر از ورد محمدی مشاهده شد. بررسی میزان کلروفیل و آنتوسیانین کالوس­ها نشان داد که در تاریکی، تولید و تجمع این رنگدانه ها بسیار کم و در نور این مقدار به شکل قابل توجهی افزایش می­یابد. در گل محمدی کالوس­های برگی و در گل سرخ مینیاتور کالوس­های ساقه­ای بیشترین مقدار کلروفیل و در هر دو گونه، کالوس­های دمبرگی و بساکی کمترین مقدار را در خود ذخیره کردند. همچنین میزان آنتوسیانین در کالوس های گلبرگ و مادگی هر دو گونه بیشتر از کالوس دیگر ریزنمونه ها بود در حالی که کمترین مقدار در کالوس بساک و دمبرگ گل سرخ مینیاتور و بساک گل محمدی مشاهده شد.

نویسندگان

سمیه عبدی راد

فارغ التحصیل مقطع کارشناسی ارشد، بخش زیست شناسی، دانشگاه شهید باهنر کرمان

فرخنده رضانژاد

دانشیار بخش زیست شناسی، دانشگاه شهید باهنر کرمان

خسرو منوچهری کلانتری

استاد بخش زیست شناسی، دانشگاه شهید باهنر کرمان

مراجع و منابع این مقاله:

لیست زیر مراجع و منابع استفاده شده در این مقاله را نمایش می دهد. این مراجع به صورت کاملا ماشینی و بر اساس هوش مصنوعی استخراج شده اند و لذا ممکن است دارای اشکالاتی باشند که به مرور زمان دقت استخراج این محتوا افزایش می یابد. مراجعی که مقالات مربوط به آنها در سیویلیکا نمایه شده و پیدا شده اند، به خود مقاله لینک شده اند :
  • Arene L, Pellegrino, C, Gudin, SA (۱۹۹۳). Comparison of the ...
  • Asano S, Ohtsubo S, Nakajima M, Kusunoki M, Kaneko K, ...
  • Banthorpe DV, Barrow SE (۱۹۸۳). Monoterpene biosynthesis in extracts from ...
  • Birsin MA, Onde S, Ozgen M (۲۰۰۱). Callus induction and ...
  • Boskabady MH, Kiani S, Rakhshandeh H (۲۰۰۶). Relaxant effects of ...
  • Burger DW, Liu L, Zary KW, Lee CI (۱۹۹۰). Organogenesis ...
  • Clairmont KB, Hagar WG, Davis EA (۱۹۸۶). Manganese toxicity to ...
  • Dixon RA, Gonzales RA (۱۹۹۶). Plant Cell Culture : A ...
  • Gasper T, Penel C, Thorpe T, Greppin H (۱۹۸۲). Peroxidases: ...
  • Hildebrandt AC, Wilmar JC, Johns AJ, Riker H (۱۹۶۳). Growth ...
  • Hill GP (۱۹۶۷). Morphogenesis of shoot primordia in cultured stem ...
  • Horn W (۱۹۹۲). Micropropagation of roses, In: Bajaj YPS (Ed.), ...
  • Hsia C, Korban SS (۱۹۹۶). Organogenesis and somatic embryogenesis in ...
  • Hudson TH, Dale EK, Davies FT, Geneve RL (۲۰۰۲). Plant ...
  • Igarashi K, Inagaki, K (۱۹۹۱). Effects of the major anthocyanin ...
  • Irani NG, Grotewold E (۲۰۰۵). Light-induced morphological alteration in anthocyanin-accumulating ...
  • Islam MM, Ahmed M, Mahaldar D (۲۰۰۵). In Vitro callus ...
  • Jabbarzadeh Z (۲۰۰۳). Effective factors on micropropagation of Damask rose. ...
  • Jabbarzadeh Z, Khosh-Khui M (۲۰۰۵). Factor affecting tissue culture of ...
  • Kafi M, Riyazi Y (۲۰۰۱). Culture of Damask rose and ...
  • Kaul K, Sabharwal PS (۱۹۷۴). Kinetin-induced changes in a-aminolevulinic acid ...
  • Lloyd D, Roberts AV, Short KC (۱۹۸۸). The induction in ...
  • Mahmood N, Piacente S, Pizza C, Barke A, Khan IA, ...
  • Mori T, Sakurai M, Shigeta J, Yoshida K, Kondo T ...
  • Murashige T, Skoog FA (۱۹۶۲). Revised medium for rapid growth ...
  • Nakamura M, Takeuchi Y, Miyanaga K, Seki M, Furusaki Sh ...
  • Pati PK, Rath SP, Sharma M, Sood A, Ahuja PS ...
  • Pontaroli AC, Camadro EL (۲۰۰۵). Plant regeneration after long term ...
  • Prasertsongskun S (۲۰۰۳). Plant regeneration from callus culture of vetiver ...
  • Rakhshandeh H, Hosseini M (۲۰۰۶). Potentiation of pentobarbital hypnosis by ...
  • Ram M, Prasad KV, Kaur C, Singh SK, Arora A, ...
  • Rout GR, Debata BK, Das P (۱۹۹۲). In vitro regeneration ...
  • Salehi H, Khosh-Khui M (۱۹۹۶). Micropropagation of miniature rose cultivars. ...
  • Schneider F (۲۰۰۵). Effect of different cultural conditions on micropropagation ...
  • Schoefs B (۲۰۰۰). The formation of chlorophyll from chlorophyllide in ...
  • Seeni S, Gnanam A (۱۹۸۱). Relationship between chlorophyll concentration and ...
  • Simoes C, Bizarri CHB, da Silva CL, de Castro TC, ...
  • Timberlake CF, Henry BS (۱۹۸۶). Plant pigments as natural food ...
  • Vaezi K (۲۰۰۱). Micropropagation of Narvane Rana by Tissue culture. ...
  • Vasil IK, Hildebrandt AC (۱۹۶۵). Growth and chlorophyll production in ...
  • Vinterhalter B, Ninkovic S, Kozomara, Vinterhalter D (۲۰۰۷). Carbohydrat nutrition ...
  • Wang J, Bao MZ (۲۰۰۷). Plant regeneration of pansy (Viola ...
  • Yi-xun Y, Ling L, Juan-xu L, Jing W (۲۰۰۹). Plant ...
  • نمایش کامل مراجع